banner
Дом / Блог / Разрушение лигнина анаэробными грибами
Блог

Разрушение лигнина анаэробными грибами

Sep 03, 2023Sep 03, 2023

Природная микробиология, том 8, страницы 596–610 (2023 г.) Процитировать эту статью

8793 Доступа

1 Цитаты

86 Альтметрика

Подробности о метриках

Лигноцеллюлоза образует стенки растительных клеток, а три ее составляющих полимера: целлюлоза, гемицеллюлоза и лигнин представляют собой крупнейший возобновляемый пул органического углерода в земной биосфере. Понимание биологической деконструкции лигноцеллюлозы помогает понять глобальную динамику секвестрации углерода и вдохновляет биотехнологии, стремящиеся справиться с нынешним климатическим кризисом путем производства возобновляемых химических веществ из растительной биомассы. Организмы в различных средах разбирают лигноцеллюлозу, и процессы деградации углеводов хорошо изучены, но биологическая деконструкция лигнина описана только в аэробных системах. В настоящее время неясно, невозможна ли анаэробная деконструкция лигнина из-за биохимических ограничений или, наоборот, она еще не измерена. Мы применили ядерный магнитный резонанс всей клеточной стенки, гель-проникающую хроматографию и секвенирование транскриптома, чтобы исследовать очевидный парадокс того, что анаэробные грибы (неокаллимастигомицеты), хорошо задокументированные специалисты по деградации лигноцеллюлозы, не способны модифицировать лигнин. Мы обнаружили, что неокаллимастигомицеты анаэробно разрушают химические связи в лигнинах травы и лиственных пород, и далее связываем активные генные продукты с наблюдаемым разрушением лигноцеллюлозы. Эти результаты меняют представления о разрушении лигнина анаэробами и открывают возможности для продвижения биотехнологий декарбонизации, которые зависят от деполимеризации лигноцеллюлозы.

Лигнин представляет собой фенилпропаноидный биополимер неправильной формы и один из трех основных компонентов лигноцеллюлозы, композитного материала, образующего вторичные клеточные стенки у высших растений. Лигнин может составлять до одной трети сухой массы клеточных стенок растений, что делает его вторым по распространенности биополимером в земной биосфере после целлюлозы и самым распространенным ароматическим полимером1,2. Ароматические группы в лигнине придают клеточным стенкам растений важные свойства, включая устойчивость к деградации, структурную жесткость и гидрофобность, свойства, облегчающие транспорт жидкости, защиту от патогенов и накопление биомассы3. Растительные клетки синтезируют лигнин из трех различных первичных п-гидроксикоричных спиртов: п-кумарилового, кониферилового и синапилового спирта. Эти мономеры полимеризуются посредством свободнорадикального механизма сочетания, образуя субъединицы п-гидроксифенила (H), гваяцила (G) и сирингила (S), которые присутствуют в различных соотношениях в разных лигнинах2. Процессы стохастической полимеризации в сочетании с вариациями пропорций S:G:H способствуют гетерогенности, разнообразию типов связей и разной степени разветвленности в структурах лигнина2. Высокая сопротивляемость лигнина определяет его биогеохимическую роль как поглотителя углерода и представляет собой серьезную проблему для биотехнологий, стремящихся устойчиво производить товарные химические вещества из лигноцеллюлозы4,5,6,7.

Современные описания биологической деполимеризации и модификации лигнина сосредоточены на аэробных системах, и они в первую очередь связаны с грибным подцарством Dikarya6,8. Хотя некоторые представители Dikarya, такие как аскомицетовые дрожжи, являются факультативными анаэробами, организмы, разлагающие лигнин, такие как белая гниль, процветают в присутствии молекулярного кислорода6,9. Охарактеризованные ферменты, модифицирующие лигнин, ограничены в разнообразии и отражают аэробную природу своих хозяев; большинство из них полагаются на кислородозависимые механизмы, которые, вероятно, недоступны в анаэробных условиях6,9. Многие из этих механизмов косвенно (неферментативно) деполимеризуют лигнин посредством образования органических свободных радикалов и поэтому называются лигнин-активными ферментами, а не лигниновыми ферментами6,9. Кислородная зависимость охарактеризованных лигнин-активных ферментов привела к широко распространенному мнению, что биологическая деконструкция лигнина не может происходить в анаэробных средах6. Описанные лигнин-активные ферменты подразделяются на лакказы, лигнинпероксидазы, марганцевые пероксидазы, универсальные пероксидазы, обесцвечивающие красители пероксидазы, другие оксидазы и β-этеразы6,9. Аэробные бактерии также производят часть этих ферментов, но ни один анаэробный организм, бактериальный или другой, не обладает каким-либо известным лигнин-активным ферментом9,10.

3,500 Da lignin oligomers (Extended Data Fig. 4a–f). A subsequent GPC experiment, incubating N. californiae with alkaline lignin extract, also resulted in a reduction of molecular weight for lignin-derived oligomers, highlighted by the appearance of a new low-molecular-weight peak in the treated samples (Extended Data Fig. 4g)./p>50% AA identity in one or more of the other sequenced anaerobic fungal genomes (Supplementary Table 1). In most cases, homologues were present across multiple genera of anaerobic fungi. Many of the predicted homologues from other genomes shared more than 90% AA identity, and most of these highly conserved peptide sequences were present across the entire diversity of available Neocallimastigomycetes genomes./p>